Статьи за последние 2 года
   
Культивирование клеток в альгинатных каплях, как высокопроизводительный метод получения клеточных сфероидов для биопечати / Филиппова С. Ю., Чембарова Т. В., Тимофеева С. В., Межевова И. В., Гненная Н. В., Новикова И. А., Лаптева Т. О. // Юж.-Рос. онкол. ж.— 2023 т. 4 № 2.— C. 47-55.— русский; рез.: английский
 
Источник: 
 - Выпуск сериального издания ( 1 )
 
Автор: 
 - Персоналии ( 7 )
Постоянная ссылка (СИД2) J2184959243
Название Культивирование клеток в альгинатных каплях, как высокопроизводительный метод получения клеточных сфероидов для биопечати
Автор Филиппова С. Ю.
Автор Чембарова Т. В.
Автор Тимофеева С. В.
Автор Межевова И. В.
Автор Гненная Н. В.
Автор Новикова И. А.
Автор Лаптева Т. О.
Источник Южно-Российский онкологический журнал
Страницы/Объём 47-55
Сокращ. назв. источника Юж.-Рос. онкол. ж.
Год 2023
Том 4
Номер 2
Адрес в Интернет http://elibrary.ru/item.asp?id=53867162
Постоянная ссылка (СИД) J21849592
Ключевые слова (авторские) альгинат%биопечать%клеточный сфероид%трехмерная клеточная культура
Место хранения Удаленный доступ. Эл. регистр. НЭБ
Дата регистрации в ВИНИТИ 09.01.2024
Язык текста русский
Язык резюме английский
Аннотация Цель исследования. Тестирование протокола получения клеточных сфероидов культур рака молочной железы (РМЖ) для биопечати путем наращивания в альгинатных каплях. Материалы и методы. Клетки культур BT-20 и MDA-MB-453 культивировали в среде DMEM с добавлением 10% FBS. Далее клетки снимали с пластика при помощи раствора трипсин-Версена и ресуспендировали в стерильном 2% растворе альгината, приготовленном на DPBS, до концентрации 105 кл/мл. Раствор альгината с клетками исследуемых культур РМЖ медленно капали через иглу 30G в стерильный охлажденный раствор хлорида кальция (100 мМ) с высоты 10 см. После полимеризации альгинатные капли отмывали в среде DMEM и культивировали в течение двух недель в среде DMEM с добавлением 10% FBS при 37°С и 5,0% СО2. Образующиеся в альгинате сфероиды фотографировали на 3-, 7-, 10- и 14-е сутки культивирования, после чего их извлекали из альгината путем выдерживания в 55мМ растворе цитрата натрия с добавлением 20мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА) и заключали в парафиновые блоки по стандартной методике с последующим гистологическим исследованием. Результаты. Клеточные сфероиды-клоны образовывались в обеих культурах уже на 3 сутки культивирования. С 3 по 10-е сутки в обеих культурах наблюдался равномерный рост клеточных сфероидов с постепенным замедлением увеличения размеров сфероидов к 14-му дню культивирования. Доля клеток, образовавших клоны (размером более 500 мкм2), на 10-е сутки составила 25,2% ± 7,1% (n = 25) в культуре BT-20 и 38,5% ± 9,9% (n = 25) в культуре MDA-MB-453. На 14-е сутки для ВТ-20 были характерны сфероиды, мало варьирующие по размеру и форме, средней площадью 1652 ± 175 мкм2, обладающие плотной структурой с ровными краями. Сфероиды из клеток культуры MDA-MB-453 оказались более рыхлыми и легко деформирующимися, их размеры и форма заметно варьировали, средняя площадь сфероидов составила 2785 ± 345 мкм2. Заключение. Получение сфероидов в альгинатных каплях уступает по скорости методам формирования клеточных конгломератов в висячих каплях или на микроячейках, однако превосходит эти методы по производительности, которая сравнима с получением сфероидов на низкоадгезивных подложках путем постоянного перемешивания среды. Кроме того, клональная природа получаемых сфероидов приводит к увеличению трат на проведение исследований и ограничивает, тем самым, их масштабируемость
Тематический раздел Биология